Разработка de novo модульных и настраиваемых белковых биосенсоров

Блог

ДомДом / Блог / Разработка de novo модульных и настраиваемых белковых биосенсоров

Sep 06, 2023

Разработка de novo модульных и настраиваемых белковых биосенсоров

Природа том 591, стр.

Nature, том 591, страницы 482–487 (2021 г.) Процитировать эту статью

58 тысяч доступов

91 цитат

377 Альтметрика

Подробности о метриках

Естественные белковые переключатели были перепрофилированы для разработки биосенсоров и репортеров для клеточных и клинических применений1. Однако количество таких коммутаторов ограничено, и их реинжиниринг представляет собой сложную задачу. Здесь мы показываем, что общий класс биосенсоров на основе белков может быть создан путем инвертирования потока информации через разработанные de novo белковые переключатели, в которых связывание пептидного ключа запускает интересующие биологические результаты2. Разработанные сенсоры представляют собой модульные молекулярные устройства с закрытым темновым состоянием и открытым люминесцентным состоянием; связывание аналита переводит переключатель из закрытого в открытое состояние. Поскольку в основе сенсора лежит термодинамическая связь связывания аналита с активацией сенсора, требуется только один целевой домен связывания, что упрощает конструкцию сенсора и позволяет осуществлять прямое считывание данных в растворе. Мы создаем биосенсоры, способные чувствительно обнаруживать антиапоптозный белок BCL-2, Fc-домен IgG1, рецептор HER2 и ботулинический нейротоксин В, а также биосенсоры сердечного тропонина I и антитела к вирусу гепатита В с высокой чувствительностью. необходимо для клинического обнаружения этих молекул. Учитывая необходимость в диагностических инструментах для отслеживания коронавируса 2 тяжелого острого респираторного синдрома (SARS-CoV-2)3, мы использовали подход к созданию сенсоров на спайковый белок SARS-CoV-2 и антитела против мембранных и нуклеокапсидных белков. Первый, который включает в себя разработанный de novo связующий домен связывающего домена спайкового рецептора (RBD)4, имеет предел обнаружения 15 пМ и сигнал люминесценции в 50 раз выше фонового уровня. Модульность и чувствительность платформы должны позволить быстро создавать датчики для широкого спектра аналитов и подчеркивают возможности дизайна белков de novo для создания многосостоятельных белковых систем с новыми и полезными функциями.

Биосенсоры на основе белков играют важную роль в синтетической биологии и клинических приложениях, но конструкция биосенсоров до сих пор в основном ограничивалась реинжинирингом природных белков1. Найти специфические домены, связывающие анализируемые вещества, которые претерпевают конформационные изменения при связывании, является сложной задачей, и даже если они доступны, обычно требуются обширные усилия белковой инженерии для эффективного связывания их с репортерным доменом5,6. Поэтому желательно создавать модульные биосенсорные платформы, которые можно легко перепрофилировать для обнаружения различных белковых мишеней, представляющих интерес. Модульные системы были разработаны для обнаружения антител7,8,9 и малых молекул10,11, но общие белковые сенсоры представляют собой более сложную задачу, учитывая большое разнообразие белковых структур, размеров и состояний олигомеризации, а также таких подходов, как полусинтетические белковые платформы12,13,14. , или переключатели кальмодулина15,16, обычно требуют тщательного скрининга для поиска потенциальных кандидатов из-за ограниченной предсказуемости17.

Белковый биосенсор может быть построен на основе системы с двумя почти изоэнергетическими состояниями, равновесие между которыми модулируется измеряемым аналитом. Желательными свойствами такого сенсора являются: (i) конформационные изменения, вызываемые аналитом, должны быть независимыми от деталей аналита, поэтому одну и ту же систему в целом можно использовать для обнаружения множества различных целей; (ii) система должна быть настраиваемой, чтобы аналиты с разными энергиями связи и разными типичными концентрациями могли обнаруживаться в широком динамическом диапазоне; и (iii) конформационные изменения должны быть связаны с чувствительным результатом. Мы предположили, что эти атрибуты могут быть достигнуты путем инвертирования информационного потока в белковых переключателях, сконструированных de novo, в которых связывание с интересующим белком-мишенью контролируется присутствием пептидного актуатора2. Мы разработали систему, состоящую из двух белковых компонентов: во-первых, «lucCage», который включает клеточный домен и домен-защелку, который содержит мотив связывания с мишенью и расщепленный фрагмент люциферазы (маленький BiT (SmBiT) 114)18; и, во-вторых, «lucKey», который содержит ключевой пептид, который связывается с открытым состоянием lucCage и комплементарным расщепленному фрагменту люциферазы (большой BiT (LgBit) 11S)18 (рис. 1a). lucCage имеет два состояния: закрытое состояние, в котором домен клетки связывается с защелкой и стерически не позволяет мотиву связывания связываться с мишенью и SmBiT от объединения с LgBit для восстановления активности люциферазы, и открытое состояние, в котором эти взаимодействия связывания не заблокирован, и LucKey может привязываться к домену клетки. Ассоциация LucKey с LucCage приводит к восстановлению активности люциферазы (рис. 1а, справа). Термодинамика системы настроена так, что свободная энергия связи lucKey с lucCage (ΔGCK) недостаточна для преодоления стоимости свободной энергии открытия lucCage (ΔGopen) в отсутствие цели (ΔGopen − ΔGCK >> 0), но в В присутствии мишени дополнительная свободная энергия связи фиксатора с мишенью (ΔGLT) приводит к открытию фиксатора и восстановлению люциферазы (ΔGopen – ΔGCK – ΔGLT << 0) (рис. 1б, в). Эта система удовлетворяет свойствам (i) и (ii), указанным выше, поскольку можно ограничить широкий спектр связывающих активностей, а поскольку переключатель термодинамически контролируется, энергии связывания LucKey и мишени можно регулировать для достижения активации при соответствующих целевых концентрациях. Поскольку LucKey и LucCage всегда одни и те же, система является модульной: одна и та же молекулярная ассоциация может быть связана с связыванием множества различных мишеней. Биолюминесценция обеспечивает быстрое и чувствительное считывание определяемой аналитом ассоциации lucCage-lucKey, удовлетворяющей свойству (iii).

15 ng ml−1; within the detection range of lucCageHER2) associated with metastatic breast cancer26./p>18 years) of both genders provided by the Director of the Clinical Chemistry Division, the hospital of University Washington. All anonymized donor specimens were provided de-identified. Because the donors consented to have their excess specimens be used for other experimental studies, they could be transferred to our study without additional consent. All samples were passed through 0.22-μm filters before use. Ten microlitres of 10× serial diluted monomeric RBD (167–0.69 nM), 5 μl of 20× lucCage (20 nM), 5 μl of 20× lucKey (20 nM), 5 μl of 20× Antares2 (2 nM), and 10, 20, 25 or 50 μl of human donor serum or simulated nasal matrix were mixed with 1:1 HBS:Nano-Glo assay buffer to reach a total volume of 75 μl. The plate was centrifuged at 1,000g for 1 min. Then, 25 μl of 25× diluted furimazine in buffer was added to each well. Bioluminescence signals were recorded from both 470/40 nm and 590/35 nm channels every 1 min for a total of 1 h. The ratio at each time point was calculated by the equation described in Extended Data Fig. 11b. Monomeric SARS-CoV-2 RBD was expressed and purified as previously described46./p>> I590). R470 is R590 × f, a predetermined constant for Antares2, and therefore the unmixed ratio (I470/R590) could be calculated in real time during signal acquisition. The constant f for Antares2 was consistently determined to be 0.43 by either recording the full spectra or from the filter set. c, Varying concentrations of RBD were spiked in 50%, 25% or 10% pooled serum or in 20% simulated nasal fluid. Absolute bioluminescence intensities and emission kinetics were different across the matrices owing to matrix inhibition effect and substrate turnover53. By contrast, calibration with Antares2 resulted in stable ratiometric signals (I470/R590). d, The bioluminescence intensity of lucCageRBD at saturating RBD concentration (green curve) is approximately 20-fold higher than the background level. Reporting the raw ratio (T470/T590) as a function of the RBD concentration compromises the sensor dynamic range (black curve) owing to a notable emission at the 470/40 nm channel (R470) from Antares2. After calculation and conversion of the unmixed ratio, the dynamic range becomes 20-fold higher than the background level with ratiometric readouts (magenta curve). e, Detection of spiked RBD in four different anonymized human sera (50%) shows that calibration using spectrally resolved Antares2 as an internal reference can minimize the variations of the intensiometric bioluminescence in these matrices. Bioluminescent signals and s.d. were measured in triplicate, and a representative one is shown for emission spectra and emission kinetics, respectively. Data are mean ± s.d./p>